logo

Заключение: (опишете растежа на анаеробите) __________________________________________ ______________________________________________________________________________________________________________________________________________________________

Сряда Кит-Тароци.

Заключение: (опишете растежа на анаеробите) __________________________________________ ______________________________________________________________________________________________________________________________________________________________

Уилсън-Блеър в сряда.

Заключение: (опишете растежа на анаеробите) __________________________________________ ______________________________________________________________________________________________________________________________________________________________

Сряда Вайнберг.

Заключение: (опишете растежа на анаеробите) __________________________________________ ______________________________________________________________________________________________________________________________________________________________

Тиогликолова среда ("Средство за контрол на стерилитета").

Заключение: (опишете растежа на анаеробите) __________________________________________ ______________________________________________________________________________________________________________________________________________________________

Дата на добавяне: 2015-04-04; гледания: 87; Нарушение на авторското право

http://lektsii.com/1-134038.html

Мляко според Тукаев

Заключение: (опишете растежа на анаеробите) __________________________________________ ______________________________________________________________________________________________________________________________________________________________

Сряда Кит-Тароци.

Заключение: (опишете растежа на анаеробите) __________________________________________ ______________________________________________________________________________________________________________________________________________________________

194.48.155.252 © studopedia.ru не е автор на публикуваните материали. Но предоставя възможност за безплатно ползване. Има ли нарушение на авторските права? Пишете ни Свържете се с нас.

Деактивиране на adBlock!
и обновете страницата (F5)
много необходимо

http://studopedia.ru/5_69411_moloko-po-tukaevu.html

Популярни диети

Tukayev мляко

Tukayev мляко

Културните свойства на микроорганизмите са особености на растежа на микроорганизми върху плътна хранителна среда.

Бактериологичен метод - основният метод за диагностициране на инфекциозни заболявания. Включва засаждане на изследваните материали върху хранителни среди, изолиране на чиста култура и идентифициране на материала (засяване върху плътни хранителни среди, течни хранителни среди, определяне на морфологична, тинкториална, културна, биохимична, антигенна, антибиотична чувствителност, микроорганизми в изследвания материал). - определяне на вида и щама на микроорганизма.)

Изолирането на чистата култура е в основата на бактериологичната работа, защото в процеса на дейност трябва да се работи с материал, съдържащ смес от микроорганизми, и идентифицирането на един вид е възможно, когато бактериите се получават в чиста, изолирана форма.

За да се получи чиста култура, е необходимо да се разделят клетките на различните видове един от друг. По метода на тяхното разделяне има две основни групи методи за изолиране на чисти култури:

Методи, основани на механично разделяне.

Методи, основани на разлики в биологичните свойства.

Най-често използваните методи са механичното отделяне на бактериални клетки - специални методи за засяване.

Техника на посевен материал върху плътна хранителна среда.

Получаване на изолирани колонии. Образуването на изолирани колонии се постига чрез механично разпределение на микробите по време на засяване. Има няколко начина за посаждане на материал.

Засяване по метода на Дригалски произведени с шпатула в петриева паничка върху твърда хранителна среда. Преди това една капка от изследваната култура се въвежда в центъра на средата с контур, след което се смила по цялата повърхност със стерилна шпатула.

Засяващ удар произведете линия, предварително разделяйки чашата Пери на 4 равни квадрата. Засяването започва с 1 квадратен паралелен ход и завършва на 4 квадрат.

Получаване на изтичане растеж може да се използва за натрупване на получената култура. В епруветка със скосен агар направете контур с материала и произведете сеитба в зигзаг, движещ се нагоре.

Втората група методи за получаване на чисти култури от микроорганизми включват:

а) филтриране. Изследваният материал се прекарва през специални филтри с определен диаметър на порите и по този начин се разделят микроорганизми по размер (например за почистване на вируси от бактерии).

Методите за биологична изолация се основават на различията в биологичните свойства на микроорганизмите.

а) Методът на Шукевич - изследваният материал се посява в кондензационната вода на наклонения агар, докато подвижните форми на микроорганизми по време на размножаването “се пълзят” по повърхността на агара от кондензационната вода (Proteus vulgaris). може да получи чиста култура.

б) метод на загряване - затопляне на материала до 80 0 С на водна баня в продължение на 10-15 минути, докато вегетативните форми умират и спорите остават и покълнат, когато се засяват върху хранителна среда (методът позволява отделяне на спорови култури от неспорови)

в) метод на охлаждане - култивиране на микроорганизми при ниски температури. Използва се за изолиране на чисти култури от психофилни бактерии (микроорганизми от рода Yersinia се отглеждат при температура 5 0 C)

г) бактериостатичен метод, при сеитба, някои химични вещества или антибиотици се добавят към изходния материал, които инхибират растежа на някои микроорганизми, без да засягат други (пеницилин забавя растежа на Gr + микроорганизми, без да засягат GR-, 5% H2SO4 убива повечето микроорганизми, с изключение на киселинно-устойчиви (туберкулозен патоген)

д) метод за обогатяване на сеитбата на избираема среда

д) инфекция на лабораторни животни.

Схема на описание на културните свойства на микроорганизмите:

Засяване по метода на Дригалски.

1. Пригответе 3 петриеви панички със стерилна хранителна среда.

2. В центъра на средната верига се добавя 1 капка от изследваната култура.

3. Нанесете равномерно капка с шпатула върху повърхността на хранителната среда в петриева паничка.

4. Без изгаряне на шпатула, прехвърлете материала последователно към втората петриева паничка.

На третата петриева чаша след инкубацията трябва да се развият изолирани колонии от микроорганизми.

Засяване на изтощаващ удар.

1. Пригответе петриева паничка със стерилна хранителна среда.

2. Разделете чашата Пери на 4 равни квадрата.

3. Засяването се извършва чрез циклиране, като се започва от 1 квадрат с паралелни ходове и завършва на 4 квадрат.

Таблица. Методи за изолиране на чисти култури от микроорганизми.

Метод за изолиране на чистата култура

Схема на бактериологичен лабораторен диагностичен метод

Етап I (естествен материал): Микроскопия.

Засяване върху обогатителна среда или твърда хранителна среда

Етап II (изолирани колонии): Проучване на културни, тинкториални и морфологични свойства. Засяване върху наклонен хранителен агар за изолиране на чистата култура

Етап III (чиста култура): Идентифициране на избраната култура.

Заключението на избраната култура

1. Какво представляват хранителните вещества и какви са основните изисквания за тях?

2. Какви информационни медии знаете? Назовете техния състав.

3. Какви методи се използват за изолиране на чисти култури от микроорганизми?

4. Защо бактериологичната диагностична методика е основната при диагностицирането на инфекциозни заболявания?

5. Назовете основната схема на бактериологичното изследване.

6. Какво определя продължителността на бактериологичното изследване?

Борисов Л. Б., Смирнова А. М., Медицинска микробиология, вирусология, имунология. М., медицина. 1994

Воробьов А.В., Биков А.С., Пашков Е.П., Рибакова А.М. Микробиология. М., Медицина. 1998

Коротяев А. И., Бабичев С. А., Медицинска микробиология, вирусология, имунология. SpecLit, 2000

Борисов Л. Б. Ръководство за практическо обучение по микробиология. М. 1973

Пяткин К.Н., Кривошеин Ю.С. Микробиология. М., 1980

Генкел П.А., Микробиология с основите на вирусологията. М., 1974.

Schlegel G. Обща микробиология. М., Мир, 1982

Урок номер 5 Физиология на микроорганизмите. Биохимични свойства на микроорганизмите.

Цел: Да се ​​научи да се определя чистотата на избраната култура, да се извърши повторно запечатване, да се вземат предвид резултатите от определяне на биохимичните свойства на бактериите.

Знае: Диаграма на бактериалния метод за диагностициране на инфекциозни заболявания, методи за въвеждане на хранителни вещества в бактериалната клетка, метаболитни характеристики на бактериалната клетка, класификация и функция на ензимите, методи за идентифициране на микроорганизми.

Да може да: Опишете биохимичните свойства на бактериите и да ги ресетеирате, за да получите чиста култура от микроорганизми и да разпознаете техните биохимични свойства.

Обосновка на темата: Изследването на биохимичните свойства на микроорганизмите се извършва с цел идентифициране на микроорганизми, което е основната връзка в диагностиката на инфекциозните заболявания.

Въпроси за самообучение:

1. Пластмасови и енергийни обмен

2. Бактериална диета Методи за доставяне на хранителни вещества до бактериална клетка. Пермеаза.

2. Бактериални клетъчни ензими.

3. Идентифициране и интраспецифично типизиране.

4. Методи за изследване на биохимичните свойства на бактериалните клетки.

1. Характеристики на метаболизма на бактериална клетка.

2. Идентифициране на бактерии.

3. Изследване на биохимичните свойства на микроорганизмите.

1. Не сеят "пъстър ред".

2. Варианти за промяна на "пъстри серии".

3. Ненасената и модифицирана среда на Kliegler.

6 Микрометър за изследване на биохимичните свойства на бактериите. Идентификационни табели.

1. Да изучава състава, предназначението и външния вид на средата Гис. Очертайте възможностите за промяна на "пъстри серии". Определя биохимичната активност на различни микроорганизми в Hiss медиите.

2. Оценете резултатите от скрининга на чиста култура: отбележете естеството на растежа и наличието на външни бактерии.

3. Осигурете чистотата на избраната култура чрез микроскопия на намазана с Грам намазка.

4. Поставете теста за каталаза върху плъзгача.

5. Да се ​​вземат предвид резултатите от определянето на биохимичната активност на подбрани чисти култури върху средата на Kligler.

6. Извършване на засяване на материала върху скосена МРА за получаване на чиста култура.

Метаболизъм (метаболизъм) - набор от процеси на трансформация на вещества и енергия, насочени към запазване и възпроизвеждане на живота.

Нивото на метаболизма на микробната клетка е по-високо от това на други организми. Метаболизмът съчетава два процеса: пластичен метаболизъм (анаболизъм, асимилация) и енергиен метаболизъм (катаболизъм, дисимилация).

Пластмасовият метаболизъм е конструктивен метаболизъм, при който се случват реакциите на синтеза на молекулите на клетката на микроорганизма, осигурява усвояването на веществата от околната среда, използвани за изграждане на клетъчни структури.Тази работа изисква енергията, която клетките получават в резултат на енергийния метаболизъм.

Енергийният метаболизъм е разграждането на хранителните вещества (протеини, въглехидрати, липиди и др.). Тези процеси могат да се проявят при аеробни или анаеробни условия. Катаболизмът и анаболизмът са взаимосвързани.

В микробна клетка съотношението повърхност към маса е много високо в сравнение с други организми. Микробните клетки имат огромна гама от ензими.

. Да се ​​оцени биохимичната активност на бактериите чрез следните реакции:

Ферментация - непълно разделяне на субстрата на междинни продукти.

Окисляване - пълно разделяне на субстрата на въглероден диоксид и вода.

Рециклиране - използване на субстрат за растеж.

Традиционният метод за идентификация по биохимични свойства се състои в засяване на чиста култура върху диференциална диагностична среда, съдържаща специфични субстрати, за да се оцени способността на микроорганизма да асимилира даден субстрат или да определи крайните продукти на неговия метаболизъм.

Определяне на захаролитична активност.

1. Определяне на биохимичната активност чрез засяване върху околната среда на „пъстрата линия”. Краткият „пъстър ред“ включва Hisa течности с моно- и дизахариди, глюкоза, лактоза, захароза, малтоза и манитол. В допълнение към гореизложеното, дългият „пъстър ред” включва среда с арабиноза, ксилоза, галактоза, глицерол и др.

2. Определяне на биохимичната активност в средата на Kligler. Средата на Kligler е предназначена за определяне на ферментацията на глюкоза, лактоза, отделяне на сероводород и отделяне на газ. Изсипва се в епруветки и се коси на половина. Инокулираната среда на Kligler е червена. Ако след инкубацията изкривената част на средата променя цвета си от червено на жълто, лактозата се ферментира, ако агаровата колона променя цвета си от червено на жълто, глюкозата се ферментира. Ако се наблюдава потъмняване в агаровата колона, се освобождава сероводород и настъпва глюкозна ферментация. Ако в средата има газови мехури, по време на ферментационния процес се отделя газ.

Определяне на протеолитичните свойства на микроорганизмите.

За да се определят протеолитичните ензими, културата се извършва върху месо-пептонов желатин, който се инкубира при стайна температура в продължение на няколко дни. В присъствието на протеолитични ензими, бактериите втечняват желатин.

Когато протеинът се разруши, може да се освободи амоняк, индол или сероводород.

Реакция към амоняк. Нанесете лента от филтърна хартия, импрегнирана с индикатора. Ако е положително, хартията става синя.

Реакция към индол. Метод на Ерлих: няколко капки реагент на Ерлих се добавят към епруветка с бактериална култура. В присъствието на индол се появява розов пръстен на повърхността.

Реакция към сероводород. Можете да използвате филтърна хартия с железен сулфат. Когато се отделя сероводород, хартията става черна.

Откриване на каталаза. 1-2 капки разтвор на водороден пероксид се поставят върху предметно стъкло и се въвежда контур с изследваната култура. Освобождаването на газови мехурчета показва наличието на каталаза.

Определяне на биохимичната активност на микроорганизми с помощта на Системата от индикаторни хартии (SIBy)

Принцип на действие: дискове, изработени от филтърна хартия, наситени с хранителни среди (хранителна среда + субстрат + индикатор) и изсушени, се съхраняват в бутилки. В лабораторията дисковете се изхвърлят в стерилни епруветки и се напълват със суспензията на изследваната култура във физиологичен разтвор. Счетоводството се извършва след 18-24 часа инкубация в термостат за промяна на цвета на индикатора.

Определяне на биохимичната активност на микроорганизмите с помощта на панели за биохимична идентификация.

Принцип на действие: в отворите на специалните пластмасови панели са подходящи изсушени среди (хранителна база + субстрат + индикатор). В лабораторията се въвежда суспензия от изследваната култура в ямките и след инкубация (5-24 часа) се взема предвид резултатът от промяната на цвета на индикатора.

Примери: Панел на биохимичната диференциация на ентеробактериите, панел на биохимичната диференциация на стафилококите.

Автоматизирани системи за идентификация.

Принципът на действие е същият като в предходния параграф. Но инкубацията на панелите, записването на резултатите и идентификацията се извършват с помощта на компютър.

Идентифициране на бактерии въз основа на биохимични характеристики, като се използват медиуми с "разнообразни серии".

1. Чистата култура на изследвания микроорганизъм се посява в контур в средата на „пъстрата линия”.

2. Културите се инкубират при 37 ° С в продължение на 18-24 часа или повече.

3. В случай, че бактерии ферментират въглехидрати преди образуването на кисели продукти, има промяна в цвета на средата;

4. При разлагането на въглехидрати до кисели и газообразни продукти, заедно с промяна на цвета, в плувката се появява газов мехур.

5. Ако се използва среда с полутечен агар, образуването на газ се записва чрез разрушаване на колоната.

При липса на ферментация, цветът на средата не се променя. Тъй като не всички бактерии ферментират, но само въглехидратите, определени за всеки вид, съставляващи средата на Giss, се наблюдава доста разнообразна картина, поради което наборът от медии с въглехидрати и цветен индикатор се нарича „разнороден ред”.

Идентифициране на бактерии на базата на биохимични характеристики при използване на Kligler

1. Чистата култура на изследваните микроорганизми се засява с линия в средата на Kligler

2. Културите се инкубират при 37 ° С в продължение на 18-24 часа.

3. В случай, че бактериите ферментират лактоза преди образуването на кисели продукти, има промяна в цвета на средата от червено до жълто в областта на скосената част.

4. В случай, че бактериите ферментират глюкоза преди образуването на кисели продукти, в областта на „колоната“ се променя цвета на средата от червено до жълто.

5. В случай, че бактериите отделят сероводород, се наблюдава промяна в цвета на средата от червено до черно в областта "колона".

6. При разлагане на въглехидрати до кисели и газообразни продукти, заедно с промяна на цвета, във вътрешността на средата се появяват газови мехурчета.

При липса на ферментация, цветът на средата не се променя.

За какво се идентифицират микроорганизмите?

2. Какви методи за идентификация най-често се използват в съвременните бактериологични лаборатории?

3. За какво се използва „пъстър ред” и какъв е неговият състав?

4. Какви са протеолитичните свойства? Как мога да ги идентифицирам?

5. Какво представляват SIB? Да се ​​идентифицират какви бактерии се използват?

Борисов Л. Б., Смирнова А. М., Медицинска микробиология, вирусология, имунология. М., медицина. 1994

Воробьов А.В., Биков А.С., Пашков Е.П., Рибакова А.М. Микробиология. М., Медицина. 1998

Коротяев А. И., Бабичев С. А., Медицинска микробиология, вирусология, имунология. SpecLit, 2000

Борисов Л. Б. Ръководство за практическо обучение по микробиология. М. 1973

Пяткин К.Н., Кривошеин Ю.С. Микробиология. М., 1980

Генкел П.А., Микробиология с основите на вирусологията. М., 1974.

Schlegel G. Обща микробиология. М., Мир, 1982

Урок номер 6 Физиология на микроорганизмите. Дишане на микроорганизми. Анаеробите. Методи за култивиране. Влиянието на факторите на околната среда върху микроорганизмите. Дератизация. Стерилизация.

Цел: Да се ​​изучат принципите за създаване на среди за анаероби и методи за тяхното отглеждане, основните методи за стерилизация и дезинфекция и използваното за това оборудване.

Знае: Особености на дишането на микроорганизмите, основните методи за изолиране на чисти култури от анаероби, състава на хранителните среди, използвани за отглеждане на анаероби, методи за контролиране на дезинфекцията и стерилизацията.

Да може да: Опише културните свойства на анаеробните бактерии и да може да избере метода на дезинфекция и стерилизация, в зависимост от свойствата на обекта.

Обосновка на темата: Анаеробът е причинител на много заболявания, тъй като диагнозата им изисква специфични методи на култивиране.

Въпроси за самообучение:

1. Дихателни вериги на микроорганизми.

2. Класификация на микроорганизмите по вид дишане.

3. Особености на хранителните среди за анаероби.

4. Създаване на условия за отглеждане на анаероби.

5. Методи за изолиране на чиста култура на анаероби.

6. Стерилизация и дезинфекция.

7. Контрол на качеството на дезинфекцията и стерилизацията.

1. Изследване на хранителни среди за анаероби: среда Кита-Тароци, среда на Уилсън Блеър, тиогликолова среда, среда на Вайнтберг, Zeissler агар, мляко според Тукаев.

2. Описание на културните свойства на анаеробите.

3. Проучване на начините за създаване на анаеробни условия.

4. Методи за стерилизация; оборудване, използвано за стерилизация.

5. Методи за дезинфекция.

6. Методи за наблюдение на ефективността на стерилизацията и дезинфекцията.

1. Хранителна среда - среда Kita-Tarozzi, среда на Уилсън-Блеър, тиогликолова среда, среда на Weintberg, Zeissler агар.

2. Възможности за растеж на анаероби на тези хранителни среди.

3. Ексикатор, анаеростат.

4. Апаратура, използвана за стерилизация.

1. Начертайте и запишете състава и предназначението на хранителните среди: средата на Кита-Тароци, средата на Уилсън-Блеър, тиогликолова среда, средата на Вайнтберг, млякото от Тукайев, айсгар на Zeissler.

2. Опишете характеристиките на растежа на анаеробите върху хранителните среди.

3. Да се ​​вземат предвид резултатите от експериментите, за да се контролира стерилизацията. Направете заключение. Попълнете таблицата: Методи за наблюдение на режима на стерилизация.

4. Определете антибактериалния ефект на ултравиолетовото лъчение върху стафилококите с помощта на готови култури.

5. Попълнете таблицата: Основни методи за дезинфекция и контрол на качеството на дезинфекцията.

6. Оценка на резултатите от посадъчния материал върху скосената МРА.

Хранителна среда за отглеждане на анаероби:

Сряда Уилсън-Блеър (железен сулфитен агар), приготвен от хранителен агар, към който се добавя глюкоза, натриев сулфит, железен хлорид (2). Анаеробните клостридии върху тази среда образуват черни колонии, дължащи се на редукция на натриев сулфит в сулфид, който, съчетан с железен хлорид, дава черна утайка.

Сряда Кита-Тароци. Състои се от хранителен бульон, 0,5% глюкоза и парчета от черния дроб. След сеитба, се налива среда с малък слой вазелиново масло.

Тиогликолов бульон с хемин (избирателна среда за култивиране на спорообразуващи анаероби). Състои се от хемин, казеин хидролизат, глюкоза, цистеин, натриев сулфат, натриев хлорид, натриев тиогликолат.

Zeissler агар на кръвната захар. Състои се от хранителен агар, 1-2% глюкоза, дефибринирана кръв.

Сряда Вайнберг. Състои се от хранителен агар, черен дроб, натриев фосфат, 0,5% глюкоза, солна киселина.

Стерилизация (обложивания, "sterilis" - безплодни) - пълно унищожаване на обекта от всички микроорганизми, които са във вегетативни и спорови форми. Физическите методи се използват главно за стерилизация: стерилизация в шкаф за сушене-стерилизация, стерилизация с пара, tindalization, autoclaving, калциниране, излагане на йонизиращо лъчение, кипене. Методи за стерилизация

1. Физични методи. Съществуват различни методи за стерилизация при използване на висока температура.

1. Калциниране на огън - пламтящ (спиртна лампа) - използва се за стерилизиране на бактериологични бримки, дисекция на игли, пързалки, пинсети.

2. Кипенето рядко се използва. Чрез варене във вода в продължение на 10-40 минути могат да се стерилизират спринцовки и игли за многократна употреба.

3. Стерилизацията със суха топлина се извършва в пещите на Пастьор. Днес за тази цел се използват шкафове за суха топлина от различни марки. Най-простата пещ Pasteur се състои от метален резервоар с две стени, оборудван с термометър за контрол на температурата и нагревателен елемент.

Правилно приготвеният материал се поставя в пещ и се стерилизира в продължение на 45 минути при температура 165-170 ° С. Епруветки, колби, бутилки, затворени с памучни запушалки.

4. Стерилизацията с пара се извършва при по-ниска температура от сухата стерилизация и се извършва при температура 100-120 ° С.

1) стерилизация с пара под налягане

2) стерилизация с пара.

Стерилизация на пара под налягане - въз основа на факта, че получената пара не излиза, а се натрупва в затворено пространство и увеличава налягането. Съответно, налягането се повишава и точката на кипене на водата; с повишаване на налягането от 1 атм. Температурата на кипене ще бъде 120 °, с повишаване на налягането от 2 атм - 134.18 ° и т.н. При тази температура микроорганизмите и техните спори умират много бързо (при 120 ° в рамките на 15-20 минути).

Този метод на стерилизация се използва за приготвяне на хранителни среди, лабораторна стъклария, метални и стъклени инструменти за дезинфекция на инфекциозен материал.

Стерилизация на пара под налягане, произведена в автоклави. Днес това е най-често използваният метод за стерилизация в бактериологичната практика.

Автоклавът е метален цилиндричен контейнер с дебели двойни стени и херметически затворен масивен капак. Автоклавът е оборудван с манометър и термометър за следене на налягането и температурата. Под дъното на автоклава има нагревателни елементи. Стерилизираните предмети се поставят вътре в контейнера и плътно затварят капака, започва повишаване на налягането и температурата.

Стерилизацията с флуидна пара се извършва в апарат Koch (Фиг. 38), който е високо метален цилиндър, с двойно дъно и свободен капак, снабден с термометър. На дъното на апарата се налива вода, загрята от дъното до кипене. Получената пара се освобождава през ръбовете на плътно затворения капак. Стерилизацията се извършва в рамките на 30-40 минути след като парата се освободи.

Парна стерилизация също може да се извърши в автоклав; в този случай капакът на автоклава остава отлепен и изпускателният клапан е отворен. Парни стерилизирани продукти, които се влошават от действието на висока температура (хранителна среда).

Единично третиране с течна пара не осигурява пълна стерилизация, тъй като вегетативните форми умират при температура 100 ° С, но не и бактериални спори. Пълна дехидратация с помощта на течна пара се постига чрез многократна (фракционна) стерилизация.

Фракционна стерилизация. Фракционната стерилизация се прилага върху материали, които не понасят температури над 100 ° C (желатин, мляко, хранителни среди с въглехидрати). При температура от 100 °, вегетативните форми на бактерии умират, след това останалите спори се оставят да покълнат във вегетативни форми и материалът се стерилизира отново при 100 ° за един ден. Останалите спори се оставят да покълнат отново и след един ден материалът се стерилизира отново при 100 °, като по този начин се постига 100% стерилизация.

Тиндализацията е фракционна стерилизация при ниска температура, предложена от Тиндал за обекти, които не понасят температури от 100 °. Те се подлагат на нагряване в продължение на 5-6 дни подред при по-ниска температура (56-60 °) за 1 час дневно. Индикацията се извършва или във водна баня, или в специални устройства с термостати.

Пастьоризацията. Методът, предложен от Пастьор за частична стерилизация на течности, които губят качествата си под действието на висока температура, се използва при температурната обработка на храните (сокове, мляко, вино). Методът се основава на факта, че когато флуидът се нагрява до 50–60 ° за 15-30 минути или до 70–80 ° за 5-10 минути, повечето от неконтролираните микроби умират, а спорите остават жизнеспособни. Следователно, необходимото условие е опаковането и охлаждането на пастьоризирания продукт.

http://marmolesreynoso.com/moloko-po-tukaevu/

Законодателна база на Руската федерация

Безплатна консултация
навигация
Федерално законодателство

мерки

  • основен
  • "МЕТОДИЧНИ ПОКАЗАНИЯ ЗА САНИТАРНО-МИКРОБИОЛОГИЧЕН АНАЛИЗ НА МЕДИЦИНСКИ МИЛИ" (одобрен от Министерството на здравеопазването на СССР 11.09.89 N 143-9 / 316-17)
  • Към момента на включване в базата данни документът не е публикуван

Приложение № 3. Приемане на хранителни вещества

1. Среда за определяне на бактерии от групата на Escherichia coli

Подготовка на среда от пептон на лактоза:

а) нормална концентрация: 10 g пептон, 5 g натриев хлорид (NaCl), 5 g лактоза се разтварят при нагряване в 1000 ml дестилирана вода рН 7.4-7.6. Изсипете 10 ml в епруветки и стерилизирайте в автоклав при 112 градуса. C (0,5 kgf / sqm) 30 минути;

б) концентриран: приготвен по същия начин като средата с нормална концентрация, но с добавка на дестилирана вода на 1000 ml дестилирана вода 50 g NaCl, 50 g лактоза, 100 g пептон.

2. Приготвяне на полутечна с лактоза

В 1000 ml дестилирана вода се разтварят 10 g пептон, 5 g NaCl, 4-5 g агар-агар, довежда се до кипене, рН се довежда до 7.2-7.4; Добавят се 1 ml 1,6% алкохолен разтвор на бромтимолово синьо. Стерилизира се при 120 градуса. +/- 2 градуса С за 20 минути. 5 g лактоза се въвежда в стопената среда, нагрява се до кипене. Излива се в стерилни епруветки с височина на колоната 3 cm и се стерилизира при 112 градуса. С (0,5 kgf / sqm) 12 минути. Срок на съхранение не повече от 2 седмици.

Приготвяне на полутечна среда с лактоза от сух препарат с BP - съгласно рецептата на етикета. Срок на годност - не повече от 7 дни.

3. Подготовка на средата Endo (модификация)

Приготвен от сухия препарат съгласно рецептата на етикета. Чашите преди засяването се сушат в термостат. Срок на годност - не повече от два дни на тъмно. В готов и охлажда до 60-70 градуса. Средата C преди изливането в чаши до 20-25 ml се оставя да се добави към 100 ml среда: 0,2 ml 100% алкохолен разтвор на основния фуксин, за да се повишат диференциращите свойства на средата и 0,2 ml 5% алкохолен разтвор на розоловата киселина, за да се избегне зараждането култури с аероби на спори. Чашите със среда трябва да бъдат изсушени преди сеитба. Срокът на годност на разтвора на фуксин и розолинова киселина е не повече от един месец.

4. Получаване на буферна среда на лактозна борна киселина

10 g пептон, 12.2 g калиев фосфат дизаместен (безводен), 4.1 g калиев фосфат монозаместен (безводен), 4.1 g калиев фосфат монозаместен (безводен), 3.2 g борна киселина (изисква точно претегляне), g лактоза се разтваря в 1 литър дестилирана вода, изсипва се в 5 ml в епруветки с поплавъци, стерилизира се при температура 112 градуса. С 0.5 kgf / sq. cm 12 минути. Срок на годност - не повече от две седмици. Препоръчително е всяка нова партида среда да се провери върху щама на Е. Coli.

5. Приготвяне на реагенти за определяне на оксидазната активност на бактериите

30-40 mg алфа-нафтол се разтварят в 2,5 ml ректифициран етилов алкохол, прибавят се 7,5 ml дестилирана вода и се разтварят 40-60 mg диметил-фенилендиамин. Разтворът се приготвя непосредствено преди определянето.

6. Готвене на хранителен агар

Приготвен от сухия препарат съгласно рецептата на етикета, стерилизиран на 120 градуса. C (1 kgf / sqm) 30 минути.

7. Готвене на средата на Уилсън-Блеър

Към 100 ml се стопи и след това се охлажда до температура от 80 градуса. С алкален хранителен агар с 1% глюкоза се добавят 10 ml 20% разтвор на натриев сулфит и 1 ml 8% разтвор на ферихлорид. Може да се използва обикновен хранителен агар, но преди употреба се добавят 10 ml 25% глюкоза и 0,5 ml 10% алкали. Водни разтвори на соли се приготвят със стерилна дестилирана вода и се стерилизират в продължение на един час с протичаща пара. Натриевият сулфит може да бъде заменен с натриев сулфат, а железният сулфат може да бъде заменен със сулфат.

8. Приготвяне на среда за определяне на окислението и ферментацията (OF) (сряда Хю-Лейфсън) t

Към 100 мл дестилирана вода се прибавят 0,2 г пептон, 0,5 г натриев хлорид, 0,03 г K2HPO4, 0,3 г агар-агар, 1 г въглехидрат (глюкоза, фруктоза), 0,3 мл 1% воден разтвор. разтвор на бромтимол син. Кипнете средата, докато съставките се разтворят напълно, настройте рН на 7,0-7,2, налейте 3-4 ml в епруветки, стерилизирайте при 112 градуса. С (0,5 kgf / sqm) 15 минути. Охладете с бар.

9. Околната среда "Shine" и "King-A" за идентифициране на P. aeruginosa

9.1. Сряда "Блясък". Месо-пептон стерилен 2% агар 100 ml, стерилно мляко, взето 10 ml, 10% воден разтвор на трифенилтетразол хлорид 8 ml, аргинин хидрохлорид 0,3 g Добавяне на разтвор на аргинин, трифенилтетразол хлорид (самостоятелно стерилизирано след съхранение) при стайна температура за 2-3 дни) и стерилно обезмаслено мляко се разбърква и се излива в 6-7 чаши.

9.2. Сряда Кинг-А. Пептон 2 g, агар-агар 1,5 g, глицерол 1,0 g, калиев сулфат 1,0 g, магнезиев хлорид 0,14 g, дестилирана вода до 100 ml, рН 7,2. Стерилизирайте при 112 градуса. C (0,5 kgf / sqm) за 15 минути, изсипва се в 6 чаши.

10. Кулинарна среда Турчински

Към 600 ml дестилирана вода се прибавят 400 ml жлъчка, 35-40 g сух хранителен агар, по 5 g калиев фосфат от монозаместен и дизаместен, 5 g натриев амониев фосфат. Стопи се при нагряване, излива се във флакон и се стерилизира при 120 градуса. C (1 kgf / sqm) 20 минути. Преди употреба в стопен и охладен агар се добавят за всеки 100 ml среда 0,5 g глюкоза; 1 ml от 1% воден разтвор на TTX, 0,6 ml 1% воден разтвор на метиленово синьо (съхраняван за не повече от 14 дни), 20 000 IU полимиксин М, 1-2 ml 0,1% алкохолен разтвор на фурацилин. Разбъркайте добре, изсипете в чашка на Петри с дебел слой 20-25 мл.

11. Приготвяне на млечна инхибиторна среда (IIA) t

Хранителен агар 85 ml, стерилно обезмаслено мляко 15 ml, 0.01% разтвор на кристално воден лилав 1.25 ml, калиев телурит 2% воден разтвор 1 ml. Разбъркайте добре и изсипете в Петри.

12. Тест на Грегерсен

Един прост, бърз начин да замените оцветяването на Gram и да не изисква оптика.

В капка от 3% разтвор на КОН върху стъклен слайд се емулгира бактериална маса, взета от плътна среда. След няколко секунди те се разбъркват чрез контур, суспензията се разхлабва и лигавицата се разтяга от контура, което показва, че тестваните микроорганизми принадлежат към грам-отрицателни. В грам-положителните микроорганизми реакцията е отрицателна.

13. Мляко според Тукаев

Към 1% пептон вода се добавят 5-6% обезмаслено мляко, средата се стерилизира при 112 градуса. С (0,5 kgf / sqm) 12 минути.

14. Изпитване на каталаза

Капка от 3% разтвор на водороден пероксид се нанася върху предметно стъкло и се прилага кръг от тестовата култура. В присъствието на каталаза се образуват мехурчета от водород.

15. Приготвяне на млечно-жълтъчно-солеви агар (OIL) t

Сух хранителен агар съгласно рецептата на етикета и 90 g натриев хлорид се разтварят чрез нагряване в 1000 ml дестилирана вода, излива се в съдове и се стерилизира при 120 градуса. С 20 минути.

Преди употреба се топи и охлажда до 50-55 градуса. Със сол агар добавете:

- стерилно обезмаслено мляко - 60 мл;

- един яйчен жълтък, старателно смесен с 50 ml физиологичен разтвор с помощта на стъклени перли;

- полимиксин М (разтворът се съхранява за не повече от 14 дни) 300 000 U (ако има външен растеж).

Разбъркайте добре и изсипете в петри.

http://zakonbase.ru/content/part/645254

Работа 5: Околна среда за отглеждане на анаероби

1. Zeissler среда (глюкоза - кръвен агар) в петриева паничка

2. Сряда Kitt-Tarozzi (захарен бульон, парчета паренхиматозни органи, висока колона, слой вазелиново масло).

първоначално с растеж

3. Средството на Wilson-Blair - агар от железен сулфит (3% МРА + 1% глюкоза + 20% натриев сулфит + 8% железен хлорид) се излива във висока колона върху вазелиновото масло. Позволява ви да идентифицирате сероводородната активност

първоначално с растеж.

4. Тиогликолова среда - използва се както течна, така и полутечна и плътна.

5. Млякото според Тукаев (1% пептон вода + 5% обезмаслено мляко) се използва за откриване на протеолитичната активност на бактериите.

Работа 6: Растеж на анаероби при засяване на мляко.

Повечето анаероби предизвикват кървене.

За да приготвите намазка със стерилна бактериологична верига, вземете съдържанието на тръбата от дъното на тръбата. Цветен грам. Клостридиумите са големи Грам (+) пръчки с неоцветявани терминални или субтерминални спори.

Работа номер 7: Разпределението на чистата култура на анаероби.

Етап I Изследване на изследвания материал: а) микроскопия, б) засяване в 5 епруветки с среда на Kitt-Tarozzi (веднага след нагряването му във водна баня при t 80 ° С за 15-20 минути и бързо охлаждане).

Етап II. Изследването на културните свойства (естеството на промените в околната среда на Kitt-Tarozzi) и получаване на изолирани колонии по метода на Weinberg (разреждане в стопен захарен агар, последвано от поставяне в тръби Weyon-Vignale) -

http://studfiles.net/preview/4333291/page:12/

Морфология, физиология, генетика и екология на микроорганизмите (стр. 4)

2. Плазмокоагулаза - разпада плазма.

Засяването се извършва в 0,5 ml от заек кръвната плазма.

3. Хемолизин - токсин, който разгражда червените кръвни клетки.

Определен на кръвен агар (CA)

4. Фибринолизин - токсин, разтопяващ фибрин.

Определя се чрез засяване в коагулирана кръв.

кръвен съсирек

Работа номер 4: Начини за създаване на анаеробни условия.

Принцип на метода на Peretz:

Принцип на метода на Fortner:

Принцип на Tubes Veyon-Vinyal:

Работа 5: Околна среда за отглеждане на анаероби

1. Zeissler среда (глюкоза - кръвен агар) в петриева паничка

2. Сряда Kitt-Tarozzi (захарен бульон, парчета паренхиматозни органи, висока колона, слой вазелиново масло).

първоначално с растеж

3. Средството на Wilson-Blair - агар от железен сулфит (3% МРА + 1% глюкоза + 20% натриев сулфит + 8% железен хлорид) се излива във висока колона върху вазелиновото масло. Позволява ви да идентифицирате сероводородната активност

първоначално с растеж.

4. Тиогликолова среда - използва се както течна, така и полутечна и плътна.

5. Млякото според Тукаев (1% пептон вода + 5% обезмаслено мляко) се използва за откриване на протеолитичната активност на бактериите.

Работа 6: Растеж на анаероби при засяване на мляко.

Повечето анаероби предизвикват кървене.

За да приготвите намазка със стерилна бактериологична верига, вземете съдържанието на тръбата от дъното на тръбата. Цветен грам. Клостридиумите са големи Грам (+) пръчки с неоцветявани терминални или субтерминални спори.

Работа номер 7: Разпределението на чистата култура на анаероби.

Етап I Изследване на изследвания материал: а) микроскопия, б) засяване в 5 епруветки с среда на Kitt-Tarozzi (веднага след нагряването му във водна баня при t 80 ° C за 15-20 минути и бързо охлаждане).

Етап II. Изследването на културните свойства (естеството на промените в околната среда на Kitt-Tarozzi) и получаване на изолирани колонии по метода на Weinberg (разреждане в стопен захарен агар, последвано от поставяне в тръби Weyon-Vignale) -

или по метода на Zeissler (сеитба с дисоциация върху глюкоза -

Етап III. Изследването на колониите. Отпадане в сряда Кит-Тароци за натрупването на чиста култура.

Етап IV. Проучване на чистата култура

а) морфологични и тинкториални свойства - намазани с Грам, Хинс, Ожешко;

б) биохимичен - „пъстър“ ред, засяване в мляко, върху средата на Уилсън-Блеър и др., t

в) антигенни и токсични свойства - при лабораторни животни.

Етап V Запис на резултатите Заключение относно формуляра.

Работа номер 8: Изследване на избрана чиста култура.

1. Културни свойства: t

2. Морфологични и тинкториални свойства в грам оцветяване:

Допълнителна информация.
Въпроси за самоконтрол:

1. Фактори на агресия.

2. Ензими в зависимост от субстрата в средата.

3. Класификация на ензимите според посоката на действие.

4. Използване на микробни ензими.

5. Среда за идентифициране на патогенни фактори.

6. Състав и предназначение на околната среда ЖСА.

7. Методи за получаване на изолирани анаеробни колонии.

8. Принципи за създаване на анаеробни условия в средата на Кит-Тороци.

10. Метод за получаване на енергия от задължителни анаероби.

11. Методи за създаване на анаеробни условия.

12. Течни среди за култивиране на анаероби.

13. Сряда Уилсън-Блеър.

14. Химични методи за създаване на анаеробни условия.

15. В какви среди са получени изолирани анаеробни колонии?

16. Как се създават анаеробните условия в микроаеростата?

17. Крайните продукти от разграждането на протеините.

18. Как се разкрива образуването на сероводород, индол, амоняк?

19. Реагенти за откриване на сероводород, индол, амоняк.

20. Среда за изследване на захаролитичните свойства на бактериите.

21. Среда, съдържаща лактоза.

22. Как изглеждат лаковите (+) колонии в средата на Ендо, Левин, Плоскирев?

23. Крайните продукти от разграждането на въглехидрати.

24. Състав и предназначение на околната среда Рапопорт.

25. Диференциращ компонент на околната среда Рапопорт.

26. Среда за изследване на протеолитични свойства.

27. Свойства на облигатните анаероби.

28. Биологични методи за създаване на анаеробни условия.

29. Фаза II изолиране на чиста култура на анаероби.

30. Околна среда за отглеждане на анаероби (течни и плътни).

31. Химични методи за създаване на анаеробни условия.

32. Цел и принцип на действие на тръбите Veyon-Vignal.

33. Кои бактерии могат да съществуват без кислород?

34. Околна среда за отглеждане на анаероби.

35. Как се създават анаеробни условия в сушилния шкаф?

36. Състав и използване на кръвен агар.

37. II I етап на изолиране на чиста култура на анаероби.

38. Съставът и предназначението на околната среда Zeissler.

39. Как се създават анаеробни условия в метода на Фортнер.

40. Принципите на анаеробните условия в средата на Кит-Тороци.

Урок по лаборатория № 7

Тема: Култивиране и обозначаване на вируси.

Цел: Асимилиране на методите за култивиране и показване на вируси,

методи за получаване и титруване на бактериофаги и техните

ВЪПРОСИ ЗА ОБУЧЕНИЕ:

1. Стойността на откритието. Етапи на развитие на вирусологията, ролята на местните учени в развитието на вирусологията.

2. Структура и химичен състав на вирусите и бактериофагите.

3. Видове взаимодействие на вируса с клетката, етапи на възпроизвеждане, резултати.

4. Методи за култивиране на вируси. Индикация на вируси.

5. Бактериофаги. Фагово взаимодействие с клетката. Умерени и вирулентни фаги. Lysogenesis.

6. Получаване и титруване на фаги. Използването на фаги в медицината, микробиологията и биотехнологията.

7. Интраспецифична идентификация на бактерии (биовари, серовари, фаговари и др.). Епидемично етикетиране.

1. Овоскопия на пилешки ембрион, инфектирайте я

ваксиниран материал. Извършете аутопсия на предварително заразения ембрион, визуално оценете състоянието на мембраните.

2. Опишете видовете клетъчни култури, техните различия.

3. Изследване на хранителни среди за клетъчни култури: Hanks, Needle, 199.

4. Да изучава и скицира методите за показване на вируси:

а) цитопатичен ефект - микроскопия и скица на култури от фибробласти в нормално и с JRS;

б) тест за хемаглутинация - поставете RSA, за да укажете вируса в тестовия материал, да оцените и скицирате;

в) реакция на хемосорбция - изтегляне от масата;

г) включвания в засегнатите клетки - скициране на прасеца Бабеш-Негри с бяс, телесно Guarnieri с едра шарка, интрануклеарни включвания с аденовирусна инфекция от маси;

д) реакция на образуване на плаки - от масата;

е) „цветен тест“ - за скициране и оценка на крайната реакция.

5. Разглобете характеристиките на структурата и начертайте структурата

6. Опишете метода за получаване на бактериофаг.

7. Разглеждане и скициране на резултатите от титруването на фагел Appelman

8. Вземете под внимание и очертайте крайните резултати от фагодиагностиката: реакции

фаголиза и фаготизиране.

9. Опишете фаговите препарати, използвани за диагностика, лечение

и превенция на заболяванията.

10. Почистване на работното място.

11. Протокол за сигурност.

Работа номер 1: Техниката на овоскопията, инфекцията и отварянето на пиле

Овоскопия: поставете ембриона върху овоскопа и маркирайте границата на въздушната кухина с молив.

Структурата на 12-дневния пилешки ембрион

въздушен хорион - алантоик

кухина (HAO)

ембрионална алантоична кухина

околоплодна жълтъчна торбичка

Инфекция: черупката над въздушната кухина се избърсва с алкохол, изгаря се на огъня, намазва се с 2% тинктура от йод, отново се избърсва с алкохол и се изгаря. За да се зарази XAD с извити ножици, да се отрежат черупките над въздушната кухина, да се отстрани част от мембранната обвивка с пинсети, материалът, който трябва да се изследва в обем ________ се прилага към XAO (краят на иглата не трябва да е под границата на въздушната кухина). Дупката в черупката е покрита с покривно стъкло и е пълна с восък или парафин.

За инфекция иглата на спринцовката се вкарва в алантоичната кухина чрез пункция в черупката, така че краят на иглата е по-нисък от нивото на въздушната кухина от ______. Дупката в черупката се излива с восък.

Отварянето на пилените ембриони се извършва в съответствие с правилата на асептиката. Черупката над въздушната кухина се третира по същия начин, както по време на инфекция, и се реже с ножици точно над границата на прикрепване на хорион-алантоичната мембрана. Визуално оценете състоянието на HAO (мътност, наличие на плаки и др.). Алантоичната течност се всмуква с пипета след пункция на ХАО в място, лишено от големи кръвоносни съдове. След това HAO се нарязва с ножици и цялото съдържание се изсипва в чашката на Петри през отвора. Амниотичната торбичка също се отрязва, освобождава се от ембриона, сканира се за лезии.

Работа номер 2: Клетъчна култура за култивиране на вируси.

http://pandia.ru/text/79/367/40408-4.php

Работа номер 4: Начини за създаване на анаеробни условия

Метод на Peretz Принцип:

Метод Fortner Принцип:

Метод Хоровец-Власов

Vejon-Vignal tubes Принцип:

Работа 5: Околна среда за отглеждане на анаероби

1. Medium Zeissler (глюкоза - кръвен агар) в петриева паничка

2. средКита-Тароци (захарен бульон, парчета паренхиматозни органи, висока колона, слой вазелиново масло).

първоначално с растеж

3. Средството на Wilson-Blair - агар от железен сулфит (3% МРА + 1% глюкоза + 20% натриев сулфит + 8% железен хлорид) се излива във висока колона върху вазелиновото масло. Позволява ви да идентифицирате сероводородната активност

първоначално с растеж.

4. Тиогликолова среда - използва се като течност, полутечна и плътна.

5. Млякото според Тукаев (1% пептон вода + 5% обезмаслено мляко) се използва за откриване на протеолитичната активност на бактериите.

Работа 6: Растеж на анаероби при засяване на мляко

Повечето анаероби предизвикват кървене.

За да приготвите намазка със стерилна бактериологична верига, вземете съдържанието на тръбата от дъното на тръбата. Цветен грам. Clostridiums са големи Gram (+) пръчки с неоцветени терминални или субтерминални спори.

Работа номер 7: Схема за разпределение на чистата култура на анаероби

Етап I Изследване на изследвания материал: а) микроскопия, б) засяване в 5 епруветки с среда на Kitt-Tarozzi (веднага след нагряването му във водна баня при t 80 ° С за 15-20 минути и бързо охлаждане).

Етап II. Изследването на културните свойства (естеството на промените в околната среда на Kitt-Tarozzi) и получаване на изолирани колонии по метода на Weinberg (разреждане в стопен захарен агар, последвано от поставяне в тръби Weyon-Vignale) -

или по метода на Zeissler (сеитба с дисоциация върху глюкоза -

Етап III. Изследването на колониите. Отпадане в сряда Кит-Тароци за натрупването на чиста култура.

Етап IV. Проучване на чистата култура

а) морфологични и тинкториални свойства - намазани с Грам, Хинс, Ожешко;

б) биохимичен - „пъстър“ ред, засяване в мляко, върху средата на Уилсън-Блеър и др., t

в) антигенни и токсични свойства - при лабораторни животни.

Етап V Счетоводни резултати. Заключение относно формуляра.

Работа номер 8: Изследването на чистата култура, посветена

При провеждане на UIRS

1. Културни свойства: t

2. Морфологични и тинкториални свойства в грам оцветяване:

Въпроси за самоконтрол:

1. Фактори на бактериалната агресия.

2. Ензими в зависимост от субстрата в средата.

3. Класификация на ензимите според посоката на действие.

4. Използване на микробни ензими.

5. Среда за идентифициране на патогенни фактори.

6. Състав и предназначение на околната среда ЖСА.

7. Методи за получаване на изолирани анаеробни колонии.

8. Принципи за създаване на анаеробни условия в средата на Кит-Тороци.

9. Какво е ферментация?

10. Метод за получаване на енергия от задължителни анаероби.

11. Методи за създаване на анаеробни условия.

12. Течни среди за култивиране на анаероби.

13. Сряда Уилсън-Блеър.

14. Химични методи за създаване на анаеробни условия.

15. В какви среди са получени изолирани анаеробни колонии?

16. Как се създават анаеробните условия в микроаеростата?

17. Крайните продукти от разграждането на протеините.

18. Как се разкрива образуването на сероводород, индол, амоняк?

19. Реагенти за откриване на сероводород, индол, амоняк.

20. Среда за изследване на захаролитичните свойства на бактериите.

21. Среда, съдържаща лактоза.

22. Как изглеждат лаковите (+) колонии в средата на Ендо, Левин, Плоскирев?

23. Крайните продукти от разграждането на въглехидрати.

24. Състав и предназначение на околната среда Рапопорт.

25. Диференциращ компонент на околната среда Рапопорт.

26. Среда за изследване на протеолитични свойства.

27. Свойства на облигатните анаероби.

28. Биологични методи за създаване на анаеробни условия.

29. Фаза II изолиране на чиста култура на анаероби.

30. Околна среда за отглеждане на анаероби (течни и плътни).

31. Химични методи за създаване на анаеробни условия.

32. Цел и принцип на действие на тръбите Veyon-Vignal.

33. Кои бактерии могат да съществуват без кислород?

34. Околна среда за отглеждане на анаероби.

35. Как се създават анаеробни условия в сушилния шкаф?

36. Състав и използване на кръвен агар.

37. Етап III изолация на чиста култура на анаероби.

38. Съставът и предназначението на околната среда Zeissler.

39. Как се създават анаеробните условия в метода на Фортнер?

40. Принципите на анаеробните условия в средата на Кит-Тороци.

http://poisk-ru.ru/s23051t3.html
Up